pemeriksaan tinja adalah suatu studi laboratorium di mana meneliti materi tinja (feses) untuk mendeteksi parasit usus. Ini adalah salah satu teknik laboratorium paling sederhana dan tertua, awalnya dikembangkan oleh Anton Van Leeuwenhoek pada abad ke-18.
Anton Van Leeuwenhoek, dianggap sebagai bapak mikrobiologi, menggunakan metode coproparasi – batuk – COPICO “langsung” untuk mengamati kotoran mereka sendiri dan menggambarkan apa yang bertahun-tahun kemudian diidentifikasi sebagai trofozoit Giardia lamblia , protozoa yang menyerang usus delga – lakukan laki-laki.
Bentuk dewasa Ascaris lumbricoides (Sumber: Wikimedia Commons)
Penyakit parasit mempengaruhi jutaan orang di dunia, terutama di negara-negara miskin atau terbelakang, di mana terdapat kondisi sanitasi yang buruk terkait dengan pembuangan kotoran dan konsumsi air yang terkontaminasi.
Diagnosis penyakit ini penting untuk pengobatan yang memadai, karena pemeriksaan koproparasitoskopi adalah alat yang sangat diperlukan untuk itu. Ini adalah tes laboratorium yang sederhana, cepat dan murah.
Pemeriksaan tinja mencakup beberapa teknik, selain memungkinkan visualisasi langsung dan kuantifikasi telur, trofozoit, kista, atau larva, memungkinkan struktur mikroorganisme untuk diidentifikasi dan dengan demikian mengidentifikasi parasit.
Teknik yang digunakan untuk pemeriksaan feses antara lain teknik pewarnaan metilen biru, metode konsentrasi, teknik Faust, Richie, teknik sedimentasi, dan pemeriksaan langsung, tunggal, atau serial.
Telur Ascaris lumbricoides yang tidak dibuahi. (Sumber: Pusat Pengendalian dan Pencegahan Penyakit [Domain publik], melalui Wikimedia Commons).
Indeks artikel
Contoh
Untuk melakukan penelitian ini, pasien diharuskan mengambil sampel tinja segar yang tidak terkontaminasi urin, air, darah (menstruasi) atau tanah. Sampel harus seukuran kenari atau, jika cair, setidaknya volumenya sesuai dengan dua sendok makan.
Pasien tidak boleh mengonsumsi obat parasit selama setidaknya tiga hari sebelum pengambilan sampel atau selama jangka waktu yang ditentukan oleh dokternya. Anda juga tidak boleh menggunakan obat pencahar.
Sampel harus ditempatkan dalam wadah kering, bermulut lebar, bertutup atau wadah sekali pakai yang dirancang khusus (tersedia di apotek pilihan Anda). Sampel harus ditempatkan di lingkungan yang sejuk, tidak boleh didinginkan lebih dari 24 jam, dan tidak boleh disimpan di dekat sumber panas atau beku.
Bila pemeriksaan yang ditunjukkan adalah serial, setidaknya diperlukan tiga sampel, yang harus diambil setiap 24 jam atau lebih, seperti yang ditunjukkan oleh dokter. Untuk kasus ini, laboratorium umumnya menyediakan satu set botol berisi larutan dengan bahan pengawet.
Ketika pasien melihat ada “cacing” di tinja, jika mungkin, ia harus memasukkannya ke dalam botol tertutup berisi air dan membawanya ke laboratorium bersama dengan botol sampel tinja.
Botol dengan sampel atau dengan “cacing” harus diberi label dan diidentifikasi dengan nama pasien, usianya, jenis kelamin dan tanggal dan waktu pengambilan sampel.
Sangat penting untuk menginstruksikan pasien secara memadai tentang semua aspek pengambilan dan penanganan sampel ini, karena hal ini bergantung pada apakah unsur-unsur yang mungkin ada dalam sampel tersebut tetap layak untuk observasi, identifikasi dan diagnosis.
Teknik
Ada pemeriksaan coproparasitoskopi langsung dan suspensi sampel dan teknik konsentrasi yang digunakan berkali-kali untuk menghindari negatif palsu dan mengamati sampel yang jauh lebih bersih. Beberapa teknik pewarnaan juga digunakan untuk mengidentifikasi parasit tertentu.
Ujian langsung
Pemeriksaan tinja langsung, dengan teknik pending drop , terdiri dari pengenceran sampel tinja dengan larutan fisiologis (0,9% NaCl) dan menempatkan setetes larutan ini dalam cekungan yang memiliki kaca objek khusus.
Setelah tetes ditempatkan pada slide, itu ditutup dengan kaca penutup dan diamati di bawah mikroskop. Teknik ini memungkinkan kita untuk mengamati telur dan kista, tetapi juga memungkinkan kita untuk mengamati unsur bergerak seperti flagellata, larva, trofozoit, ciliata, dll.
Teknik suspensi dan konsentrasi
Teknik suspensi menggunakan larutan yang lebih rapat daripada unsur-unsur yang diamati, sehingga unsur-unsur tersebut mengapung di permukaan cairan dan dapat dikumpulkan, karena tetap terkonsentrasi di lapisan permukaan larutan.
Teknik ini memiliki keuntungan karena memungkinkan sampel kotoran yang cukup bersih, karena lebih padat, tetap berada di bagian bawah botol. Kerugian relatifnya adalah larutan menyusut dan mengubah bentuk mikroorganisme dalam waktu singkat.
Metode ini tidak digunakan untuk telur cacing dan cestoda karena sangat berat dan tidak mengapung dalam larutan ini. Mereka banyak digunakan untuk mengamati protozoa dalam bentuk tropozoikum atau telurnya dan untuk pengamatan larva seperti Strongyloides stercoralis.
Teknik lain yang banyak digunakan karena tidak merusak mikroorganisme dalam sampel dan sederhana serta murah adalah teknik sedimentasi formalin.
Contoh teknik konsentrasi termasuk teknik Faust dan Richie.
Teknik berbeda yang memungkinkan visualisasi mikroskopis telur, larva atau unsur lain dari parasit usus yang berbeda, dikombinasikan dengan teknik pewarnaan, memungkinkan identifikasi dan diagnosis penyakit ini.
Contoh
Selanjutnya, kasus klinis dijelaskan dan beberapa gambar ditampilkan yang menggambarkan kegunaan pemeriksaan tinja untuk diagnosis dan evaluasi manfaat pengobatan.
Trichuris trichuria egg (Sumber: CDC / Dr. Mae Melvin, Courtesy: Public Health Image Library [Domain publik] melalui Wikimedia Commons)
Seorang pasien laki-laki berusia 18 tahun datang ke praktek dokter dengan keluhan nyeri perut kolik, lebih hebat di daerah periumbilikal, mual, dan diare cair.
Ketika menanyai pasien, dokter mencatat dua poin penting: 1) pasien mengacu pada mandi di danau di daerah pedesaan dan 2) dia dikejutkan oleh fakta bahwa tinjanya mengapung di toilet. Setelah memeriksa pasien, dokter mencurigai adanya Giardia lamblia .
Siklus hidup Giardia lamblia (Sumber: LadyofHats [CC0] melalui Wikimedia Commons)
Protozoa ini bertempat di usus kecil manusia dan mengganggu penyerapan lemak, yang menghasilkan tinja yang sangat berminyak yang cenderung mengapung. Polusi sering terjadi dari air yang tercemar di danau atau sungai di daerah pedesaan atau dari kolam atau bak air panas yang tidak terawat.
Giardia lamblia trophozoites (Sumber: Foto oleh Eva Nohýnková, Departemen Kedokteran Tropis, Fakultas Kedokteran 1, Universitas Charles di Praha dan Rumah Sakit Bulovka, Republik Ceko. Gambar dalam makalah oleh Marie Lipoldova, Laboratorium Imunologi Molekuler dan Seluler, Institut Genetika Molekuler, Akademi Ilmu Pengetahuan Republik Ceko, Praha, Republik Ceko [CC BY 4.0 (https://creativecommons.org/licenses/by/4.0)] melalui Wikimedia Commons)
Dokter memerintahkan pemeriksaan tinja dan hasilnya mengkonfirmasi keberadaan Giardia lamblia . Setelah pengobatan berakhir, pemeriksaan tinja lain diindikasikan untuk memastikan tidak adanya kista atau trofozoit Giardia lamblia .
Referensi
- Buonfrate, D., Mena, MA, Angheben, A., Requena-Mendez, A., Muñoz, J., Gobbi, F.,… & Kelompok Studi Proyek COHEMI. (2015). Prevalensi strongyloidiasis di Amerika Latin: tinjauan sistematis literatur. Epidemiologi & Infeksi , 143 (3), 452-460.
- oleh Haro Arteaga, I., & Ruiz, AEC (2014). Diagnosa dari. Parasitologi medis (4a , 347.
- Mendoza, D., Nunez, FA, Escobedo, AA, Pelayo, L., Fernandez, M., Torres, D., & Cordovi, RA (2003). Kegunaan 2 metode koproparasitologi dan pemanfaatannya dalam uji coba terapi antigiardiasis. Jurnal Kedokteran Tropis Kuba , 55 (3), 174-178.
- Harga, -DL (2017). Prosedur manual untuk diagnosis parasit usus . CRC Pers.
- Sahin, I., Kilic, H., Ozca, M., & Orhan, R. (1984). Sebuah studi copro-parasitological pada pegulat tim nasional. Mikrobiyoloji bülteni , 18 (2), 114-118.